DOI QR코드

DOI QR Code

Selection of High Efficient Enzyme for Protoplasts Isolation from Mushrooms

버섯류의 원형질체 나출을 위한 고효율 효소 선발

  • Kim, Jong-Kun (Graduate School of Bio.&Information Technology, Hankyong National University) ;
  • Kim, Jin-Hee (Graduate School of Bio.&Information Technology, Hankyong National University) ;
  • Kong, Won-Sik (Mushroom Research Division, National Institute of Horticultural & Herbal Science, RDA) ;
  • Kang, Hee-Wan (Graduate School of Bio.&Information Technology, Hankyong National University)
  • 김종군 (한경대학교 생물환경.정보통신 전문대학원) ;
  • 김진희 (한경대학교 생물환경.정보통신 전문대학원) ;
  • 공원식 (농촌진흥청 국립원예특작과학원 버섯과) ;
  • 강희완 (한경대학교 생물환경.정보통신 전문대학원)
  • Received : 2010.06.22
  • Accepted : 2010.06.22
  • Published : 2010.06.30

Abstract

This study was carried out to select cell wall degrading enzymes for maximizing protoplast yield from Basidiomycetes. The protoplasts were released from spore suspension, mycelia cultured on cellophane membrane, and homogenized mycelia of Flammulina velutipes using commercial cell wall degrading enzymes. The highest yield of protoplasts was obtained from the homogenized mycelia treated with the enzyme combination of $Glucanex^R$ 200G and cellulase onozuka R-10. The protocol was also available for Pleurotus ostreatus, P. eryngii, and Hypsizygus marmoreus.

현재 시판되고 있는 세포벽 분해 효소 중 cellulase onozuka R-10(Yakult Honsha, Japan), yatalase(Takara), $Glucanex^R$ 200G(Novo Industry, Denmark)를 조합하여 Flammulina velutipes를 대상으로 가장 효율적인 방법을 선발하고, 선발된 방법을 Pleurotus ostreatus, P. eryngii, Hypsizygus marmoreus에 적용하였다. F. velutipes의 포자, 셀로판지에 배양한 균사, homogenizer로 마쇄한 균사체를 대상으로 공시한 세포벽 분해효소를 단독 혹은 조합하여 처리하였다. 그 결과, 포자현탁액이나 셀로판지에 배양한 균사를 사용하는 것에 비해 homogenizer로 마쇄한 균사체를 사용하는 것이 높은 수율로 원형질체를 분리할 수 있었다. 또한 시험에 사용한 효소 중선발된 $Glucanex^R$ 200G와 cellulase onozuka R-10 효소의 혼합 처리에서 고효율의 원형질체가 분리되었다. 분리된 원형질체를 대상으로 재생률을 조사한 결과, 0.39~0.51% 범위의 재생률을 나타내었다

Keywords

References

  1. 고승주, 신관철, 유영복. 1985. 느타리버섯과 여름느타리버섯의 원형질체 나출과 재생. 한국균학회지 13: 169-177.
  2. Cho, Y., Davis, J. W., Kim, K. H., Wang, J., Sun, K. H., Robert, A., Cramer, J. and Christopher, B. L. 2006. A high throughput targeted gene disruption method for Alternaria brassicicola functional genomics using Linear Minimal Element LME) constructs. MPMI 19:7-15. https://doi.org/10.1094/MPMI-19-0007
  3. Kim, S., Song, J. and Choi, H. T. 2004. Genetic transformation and mutant isolation in Ganoderma lucidum by restriction enzyme mediated integration. FEMS Microbiol. Lett. 233:201-204. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2004.tb09483.x
  4. Li, G., Li, R., Liu, Q., Wang, Q., Chen, M. and Li, B. 2006. A highly efficient polyethylene glycol-mediated transformation method for mushrooms. FEMS Microbiol. Lett. 256:203-208. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2006.00110.x
  5. Peberdy, J. F. 1976. Factors affecting protoplast release in some filamentous fungi. Trans. Br. Mycol. Soc. 67:23-26. https://doi.org/10.1016/S0007-1536(76)80003-4
  6. Sun, L., Cai, H., Xu, W., Hu, Y., Gao, Y. and Lin, Z. 2001. Effcient transformation of the medicinal mushroom Ganoderma lucidum. Plant Molecular Biology Reporter 19:383a-383j. https://doi.org/10.1007/BF02772841
  7. Yi, R., Tachikawa, T., Mukaiyama, H., Mochida, Y., Ishikawa, M. and Aimi, T. 2009. DNA-mediated transformation system in a bipolar basidiomycete, Pholiota microspora(P. nameko). Mycoscience 50:123-129. https://doi.org/10.1007/s10267-008-0456-y
  8. Yoo, Y. B., Peberdy, J. F. and You, C. H. 1985. Studies on protoplast isolation from edible fungi. Kor. J. Mycol. 13:1-10.

Cited by

  1. Mutagenesis of of Hypsizygus marmoreus by Gamma Ray Irradiation vol.39, pp.3, 2011, https://doi.org/10.4489/KJM.2010.39.3.231
  2. Mutagenesis of Pleurotus eryngii by Gamma Ray Irradiation vol.40, pp.2, 2012, https://doi.org/10.4489/KJM.2012.40.2.93