서 론

장염은 장에 염증이 생기는 모든 질병을 일컫는 광범위한 용어로, 어느 연령에서든지 흔히 올 수 있다. 소장이 가장 잘 침범되나 대장까지 염증이 파급할 수 있으며 역으로 십이지장과 위까지 확산될 수 있다. 임상 증상은 장내강 수분 소실로 인한 설사와 구토 발생되나 심한 경우 쇼크에 빠질 수 있고 전해질 손실로 인한 경우에 부정맥이 나타날 수 있으며 경련도 오기도 하며, 치유과정에서 일시적인 융모 위축과 기능의 손실로 경미한 일시적인 흡수 불량이 나타날 수 있다. 장염의 원인은 매우 다양하나 일반적으로 성인과 소아에서 불량 음식으로 인한 경미한 장염이 생기거나 비소와 수은 같은 중독이 심한 장염의 원인이 되기도 하며, 유아에서 유행성으로 심한 장염이 발생할 수 있으며 종종 치명적이다. 대게 virus 분체 및 대장균이 검출되기도 발견되기도 한다1).

장염의 치료는 일반적으로 시간이 지나면 특별한 치료를 하지 않아도 저절로 낫게 되며, 규칙적이고 자극성이 적은 식사요법을 권장과 안정 및 수액보충에 의한 탈수의 치료 등이 행해지고, 감염성인 경우에는 각각의 균에 감수성이 있는 항생제를 투여하나2), 항생물질에 대한 내성으로 인한 문제로 인해 권장하지 않는다3,4).

Lipopolysaccharide(LPS)는 병원균 내독소로서 그람 음성세균의 막구조를 형성하고 있으며 다당류, 인지질과 소량의 단백질로 구성되어 있다. 또한 여러 종류의 염증세포와 조직을 구성하는 세포들이 생산하는 cytokine들의 생산을 촉진하고5), cytokine의 분비는 신호전달경로에서 JUN N-terminal kinase (JNK)와 같은 mitogen-activated protein kinases (MAPKs) 와 nuclear factor kappa B (NF-κB) 등의 전사인자에 의해 조절된다고 알려져 있다6). LPS의 과도한 자극은 macrophage에서 tumor necrosis factor-α (TNF-α), interleukin (IL)-1β 및 IL-6와 같은 전 염증성 매개물질을 분비시킬 뿐만 아니라 superoxide (O2-), hydrogen peroxide (H2O2)과 hydroxyl radicals와 같은 reactive oxygen species (ROS) 생성을 촉진하고 nitric oxide (NO)를 과도하게 활성화가 되어 inducible nitric oxide synthase (iNOS) 염증을 유발시켜 조직의 손상을 초래한다7,8). 따라서 LPS는 염증 반응을 연구하는 실험 모델로 많이 사용되고9), 장염을 유도하여 여러 동물에게 실험이 진행되어지고 있다10,11). 또, 항산화와 항염증 효과가 있는 약물 투여로 과도한 ROS에 의한 위염 손상이 감소됨이 보고되고 있다12).

황금(Scutellariae Radix)은 꿀풀과(Labiatae)에 속한 多年生 本草인 황금(Scutellaria baicalensis Georgi)의 주피(周皮)를 벗긴 뿌리로 가을에 채취하여 수근(鬚根)과 周皮를 제거하고 쇄건(曬乾)한 것이며, 한의학에서는 황금을 청열조습(淸熱燥濕)의 효능을 가진 약물로 분류되어 폐열해수(肺熱咳嗽), 습열사리(濕熱瀉利), 황달(黃疸), 열림(熱淋), 토뉵(吐衄), 붕루(崩漏), 태동불안(胎動不安), 옹종(癰腫), 정창(疔瘡), 목적종통(目赤腫痛), 장열번갈(壯熱煩渴) 등을 치료하여 급만성 호흡기질환, 폐렴, 비염, 인후염, 감모 등에 응용될 수 있는 것으로 알려져 있다13-16). 황금의 성분으로는 flavonoid계 화합물로서 30여 종이 분리되어 있는데, baicalein, biacalin, chrysin, oroxylin-A, oroxylin-α -7-O-glucuronide, wogomin, wogonoside, skullcapflavone, dihydrobaicalin 등이 있다17). 황금의 약리작용으로는 항천식작용18), 항암작용19), 항균작용20), 항산화활성21), 항고지혈효과22), 생체보호작용23), 면역조절기능24) 등이 보고되었다. 한의학에서는 약물의 독성 저하 및 제거뿐만 아니라 약효효과를 증가시키기 위해서 주초(酒炒)를 한다. 전통 약초는 생물학적 활성 성분의 복합체로 구성되어 있고 일부 치료 효과를 향상시키기 위해서 열처리를 하였다25). 이러한 처리 방법은 화학적 변화를 통해 flavonoid계를 포함한 polyphenol 화합물을 증가시켜 생물학적인 변화가 개선된다26,27). 황금 또한 열처리로 인해 flavonoid계를 포함한 polyphenol 화합물을 증가시켜 생물학적 활성물질 변화를 야기한다28,29). 이와 같이 황금의 항산화 및 항염증에 대해 연구가 되어 있음에도 불구하고 황금과 주초(酒炒)한 황금에 대한 연구는 미흡하다.

이에 본 연구에서는 황금과 에탄올 주초(酒炒)한 황금 추출물을 이용하여 LPS 유도된 급성 장염 모델을 쥐에서 항산화와 항염증에 대한 효과를 연구한 바이다.

재료 및 방법

1. 재료

1) 동물

실험에 사용된 동물은 ICR 생쥐 6주령 수컷으로 샘타코(오산, 한국)에서 구입하여 일주일 동안 실험실 환경에 적응시킨 후 사용하였다. 동물 사육실의 조건은 conventional system으로 온도 22±2℃, 습도 50±5%, 명암주기(light : dark cycle)는 12시간 주기로 조절하였다. 사료는 고형사료(조단백질 22.1% 이상, 조지방 8.0% 이하, 조섬유 5.0% 이하, 조회분 8.0% 이하, 칼슘 0.6% 이상, 인 0.4% 이상, 삼양사, 항생제 무첨가)와 물을 충분히 공급하였다. 대구한의대학교 동물실험 윤리위원회의 승인 (DHU 2015-014)을 얻어 시행하였으며 동물관리 규정을 준수하였다.

2) 시료

본 실험에 사용한 황금은 Ominherb ㈜ (영천, 한국)에서 구입한 것으로 생약규격집에 맞춰 관능검사하여 약전규격에 합격한 것만을 선정하여 사용하였고, 관능검사는 대구한의대학교 한의과대학 노성수 교수에 의해서 실시되어졌다.

3) 시약

LPS from Escherichia coli (serotype O127:B8, purity over 99.9%; L3137), Nitrocellulose membranes는 Amersham GE Healthcare (Little. Chalfont, UK)에서 구입하였고, Phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF), nuclear factorkappa B p65 (NF-κB p65), Inducible nitric oxide synthase (iNOS), cyclooxygenase-2 (COX-2), tumor necrosis factor alpha (TNF-α), interleukin-6 (IL-6), superoxide dimutase (SOD), catalase(CAT), glutathione peroxidase(GPx), Histone, β-actin 과 2차 항체는 Santa Cruz Biotechnology (Santa Cruz, CA, USA)로부터 구입하였다. c-JUN은 cell signaling에서 구입하였다. Protease inhibitor mixture DMSO, solutionethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)는 Wako Pure Chemical Industries, Ltd. (Osaka. Japan)에서 구입하였다. 또한, 2',7'-Dichlorofluorescein diacetate (DCFH-DA)와 Dihydrorhodamine 123는 Molecular Probes (Eugene, OR, U.S.A.)에서 ECL Western Blotting Detection Reagents는 GE Healthcare로부터 구입하여 사용하였다. 단백질 정량을 위한 BCA protein assay kit는 Thermo Scientific (Rockford, IL, USA)에서 구입하였다.

2. 방법

1) 황금의 시료 준비

건조된 황금 절편을 roasting machine (Genesis Co., Ltd., Kyungki-do,Korea) 기기를 이용하여 200℃에서 7분 간 에탄올 30% 사용해 주초(酒炒)를 하였다. 70% 에탄올에 시료를 담아 상온에서 60-Hz 초음파로 3시간 동안 분쇄하고 추출해 이어서 농축 및 동결건조를 실시하여 36.8% 수율로 추출되었다. 그리고 건조된 생황금 절편 또한 같은 방법으로 분쇄하여 22.8% 수율로 추출하였다.

2) 급성 장염 모델 및 약물 투여

ICR mouse (6주령, 수컷)로부터 실험군을 총 4개의 군으로 정상군 (Normal) 5마리, 급성 장염을 유발하고 증류수 처리한 대조군 (Vehicle) 5마리, 급성 장염을 유발하고 황금 추출물을 100 ㎎/㎏으로 처리한 약물투여군 (SR) 5마리, 200℃ 주초(酒炒)한 황금 추출물을 100 ㎎/㎏으로 처리한 약물투여군(SR200) 5마리로 나누어 황금 및 주초(酒炒)한 황금 추출물을 3일간 100 ㎎/㎏/body weight의 농도로 각 1회 경구 투여를 하였다. 마지막 약물 투여 1시간 후 LPS 20㎎/㎏ 체중의 농도로 복강주사를 실시하였다. LPS 투여 24시간 후, 심장천자 방법으로 혈액을 채취하여 즉시 원심분리기를 이용해 혈청을 분리하였고 그 후에, saline (0.9% NaCl, pH 7.4) 관류하여 장기를 채취해 분석 전까지 빠르게 –80℃ 보관하였다.

3) 혈청 산화적 스트레스 바이오마커 측정

심장에서 채혈한 혈액을 4,000 rpm 10분 원심 분리하여 혈청을 얻었고 장 조직은 1 mM EDTA-50 mM sodium phosphate buffer (pH 7.4)를 이용하여 분쇄하였다. 혈청 내의 ROS를 측정하기 위하여 25 mM DCFH-DA를 혼합한 후, 형광 광도계를 이용하여 0분부터 매 10분씩 emission wavelength of 530 nm와 excitation wavelength of 485 nm를 이용하여 30분간 측정한 산출 값을 계산하였다29). 혈청 NO 측정을 측정하기 위하여 Misko et al.,30)의 방법을 시행하여 측정하였다.

4) Western blot

장의 세포질단백질을 얻기 위해 100 mM Tris-HCl (pH 7.4), 5 mM Tris–HCl (pH 7.5), 2 mM MgCl2, 15 mM CaCl2, and 1.5 M sucrose, and then 0.1 M DTT and protease inhibitor cocktail을 첨가한 buffer A를 넣고 tissue grinder (Bio Spec Product, USA)로 분쇄한 후 10% NP-40 용액을 첨가하였다. 아이스 위에서 20분간 정치시킨 후 12,000 rpm으로 2분간 원심분리 하여 세포질단백질을 포함하고 있는 상층액을 분리하였다. 핵단백질을 얻기 위해 10% NP-40가 더해진 buffer A에 두 번 헹구고 100 ㎕의 buffer C (50 mM HEPES, 50 mM KCl, 0.3 mM NaCl, 0.1 mM EDTA, 1 mM DTT, 0.1 mM PMSF and 10% glycerol)를 첨가해 재부유 시킨 뒤 10분마다 voltex를 3번하였다. 4℃에서 12,000 rpm으로 10분간 원심 분리한 후 핵단백질을 포함하고 있는 상층액을 얻어 –80℃에서 각각 냉동 보관하였다. 장 조직의 세포질단백질의 SOD, CAT, GPx, iNOS, COX-2, TNF-α, IL-6, β-actin 및 핵단백질 NF-κB p65, c-JUN, Histone, 단백질의 발현을 측정하기 위해 10 ㎍의 단백질을 8~15% SDS-polyacrylamide gel을 이용하여 전기연동 후, acrylamide gel을 nitrocellulose membrane으로 이동시켰다. 준비된 membrane에 각각의 1차 antibody를 처리하여 4℃에서 overnight 시킨 다음 PBST로 6분마다 5회 세척하고, 각각 처리된 1차 항체에 사용되는 2차 항체(PBST로 1:3000로 희석해서 사용)를 사용하여 상온에서 1시간 반응시킨 후, PBST로 6분마다 5회 세척하였다. 그리고 enhanced chemiluminescence (ECL) 용액을 GE Healthcare (Arlington Heights, IL, USA)에 노출시킨 후, Sensi-Q2000 Chemidoc (Lugen Sci Co., Ltd., Seoul, Korea)에 감광시켜 단백질 발현을 확인한 후, 해당 band를 ATTO Densitograph Software (ATTO Corporation, Tokyo, Japan)프로그램을 사용하여 정량하였다.

5) 통계처리

모든 수치는 평균 ± 표준오차 (Mean ± S.E)로 표시하였으며, SPSS (18.0 for Windows program)을 사용하여 one-way analysis of variance (ANOVA)로 유의수준 p-value < 0.05에서 검정하였다.

결 과

1. 무게 변화 측정

실험 기간 동안 체중 변화를 측정하였다. 정상군(2.0 ± 0.2(p < 0.001)), LPS 유도된 급성 장염 생쥐인 대조군(-4.7 ± 0.3), 생황금 투여군(SR ; -3.5 ± 0.1 (p < 0.05))과 주초(酒炒)한 황금 투여군(SR200 ; -3.2 ± 0.1 (p < 0.01)) 체중 감소를 대조군에 비해 유의성 있게 방지하였다(Fig. 1).

Fig. 1.Body weight change. Body weight change N : Normal, Veh : vehicle-administered and LPS-treated mice, SR : Non heat processed Scutellariae Radix-administered and LPS-treated mice, SR200 : Heat heat processed Scutellariae Radix-administered and LPS-treated mice. Date are the mean SEM. Significance : * p < 0.05, **p < 0.01, *** p < 0.001 versus vehicle-administered and LPS-treated mice.

2. 혈액의 산화적 스트레스 바이오마커 측정

부검 시 심장에서 채취한 혈액을 원심 분리 후 혈청을 분리 하였다. 분리된 혈청을 이용하여 산화적 스트레스의 마커인 ROS와 NO를 측정하였다. ROS에서 대조군은(708 ± 15 fluorescence/min/ml) 정상군(456 ± 20 fluorescence/min/ml (p < 0.001))에 비해 수치가 증가하였고, 생황금 투여군에서 (660 ± 24 fluorescence/min/ml) 감소한 경향이 있었으며, 주초(酒炒)한 황금 투여군에서 (549 ± 35 fluorescence/min/ml(p < 0.01)) 생쥐에서는 대조군에 비해 유의성 있게 감소하였다. NO 측정에서 대조군은 (1.72 ± 0.22 mmol/mL) 정상군 (0.11 ± 0.05 mmol/mL (p < 0.001))에 비해 수치가 증가하였고, 생황금 투여군에서 (1.12 ± 0.48 mmol/mL) 감소한 경향이 있고, 주초(酒炒)한 황금 투여군에서 (0.62 ± 0.17 mmol/mL (p < 0.01)) 대조군에 비해 유의성 있게 감소하였다(Table 1).

Table 1.Oxidative stress biomarker in serum. Nor : Normal, Veh : vehicle -administered and LPS-treated mice, SR : Non heat processed Scutellariae Radix-administered and LPS-treated mice, SR200 : Heat heat processed Scutellariae Radix-administered and LPStreated mice. Date are the mean SEM. Significance : *p < 0.01, **p < 0.001 versus vehicle-administered and LPS-treated mice.

3. 장 조직의 항산화 단백질 SOD, CAT, GPx 측정

장 조직에서 western bolt을 실시하여 항산화 효소인 SOD, CAT, GPx를 측정 하였다. 그 결과 SOD의 발현은 대조군(0.82 ± 0.04)은 정상군(1.00 ± 0.06 (p < 0.05))에 비해 유의하게 감소하였고, 생황금 투여군(0.81 ± 0.06)과 주초(酒炒)한 황금 투여군에서 (0.91 ± 0.17) 증가하는 경향을 확인할 수 있었다. CAT의 발현 역시 대조군(0.53 ± 0.03)이 정상군(1.00 ± 0.07 (p < 0.001))에 비해 유의하게 감소하였으나 황금 투여군에서(0.77 ± 0.07 (p < 0.01))에서 증가하는 경향이 있었고, 주초(酒炒)한 황금 투여군에서(1.13 ± 0.02 (p < 0.001)) 유의성 있게 증가 하였다. GPx의 발현 또한 대조군은(0.55 ± 0.10) 정상군(1.00 ± 0.01 (p < 0.01))에 비해 유의하게 감소하였고 황금 투여군에서(0.99 ± 0.06 (p < 0.01))과 주초(酒炒)한 황금 투여군에서(1.40 ± 0.09 (p < 0.001)) 유의하게 증가하였다(Fig. 2).

Fig. 2.Expression of anti-oxidant enzyme in Intestine. Expression of anti-oxidant enzyme in Intestine. Nor : Normal, Veh : vehicle-administered and LPS-treated mice, SR : Non heat processed Scutellariae Radix-administered and LPS-treated mice, SR200 : Heat heat processed Scutellariae Radix-administered and LPS-treated mice. Date are the mean SEM. Significance : *p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001 versus vehicle-administered and LPS-treated mice.

4. 장조직의 염증성 사이토카인 및 매개인자 측정

장 조직에서 western bolt을 실시하여 염증의 매개인자인 NF-κB p65와 c-JUN을 측정하였다. 그 결과 NF-κB p65의 발현은 대조군(1.18 ± 0.16)은 정상군(1.00 ± 0.11)에 비해 증가하는 경향이 있었고, 생황금 투여군(1.09 ± 0.15)와 주초(酒炒)한 황금 투여군에서는(0.90 ± 0.10) 감소하는 경향이 있었다. 또, c-JUN의 발현은 대조군(1.77 ± 0.11)에서 정상군(1.00 ± 0.10 (p < 0.001))에 비해 증가 하였지만 황금 투여군(1.48 ± 0.10)에서는 감소하는 경향이 있었고 주초(酒炒)한 황금 투여군에서는(1.02 ± 0.09 (p < 0.001)) 정상군 가까이 감소하였다(Fig .3). 또한 대조군의 장조직에서 COX-2, iNOS와 TNF-α, IL-6의 발현을 확인한 결과, 대조군에서의 COX-2(1.63 ± 0.16)의 발현은 정상군(1.00 ± 0.10(p < 0.01))에 비해 크게 증가하였으나 생황금 투여군(1.52 ± 0.17)에서는 감소하는 경향이 있었고, 주초(酒炒)한 황금 투여군(1.20 ± 0.10 (p < 0.05)) 유의하게 감소하였다. iNOS의 발현은 정상군(1.00 ± 0.11 (p < 0.01))에 비해 대조군(1.83 ± 0.22)에서 크게 증가하였고 생황금 투여군(1.60 ± 0.11)에서는 감소하는 경향이 있었고, 주초(酒炒)한 황금 투여군(0.98 ± 0.20 (p < 0.05))에서는 유의성있게 감소하였다. TNF-α의 발현은 대조군(1.47 ± 0.15)이 정상군(1.00 ± 0.06 (p < 0.05))에 비해 유의하게 증가하였으나 생황금 투여군(1.28 ± 0.07)에서 감소하는 경향이 있었고 주초(酒炒)한 황금 투여군(0.96 ± 0.05 (p < 0.01))에서는 유의성 있게 감소하였다. IL-6의 경우, 대조군(1.80 ± 0.18)에서는 정상군(1.00 ± 0.07(p < 0.01))에 비해 유의성 있게 증가하였으나 생황금 투여군(1.71 ± 0.09)과 주초(酒炒)한 황금 투여군(1.33 ± 0.11) 감소하는 경향만 보였다(Fig. 4).

Fig. 3.Expression of inflammtion-related proteins in Intestine. inflammtion-related proteins c-JUN (A), nuclear factor-kappa B (NF-κB);(B) expression levels in the Intestine. Nor : Normal, Veh : vehicle-administered and LPS-treated mice, SR : Non heat processed Scutellariae Radix-administered and LPS-treated mice, SR200 : Heat heat processed Scutellariae Radix-administered and LPS-treated mice. Date are the mean SEM. Significance : *p < 0.001 versus vehicle-administered and LPS-treated mice.

Fig. 4.Expression of inflammtion-related proteins in Intestine. inflammtion-related proteins cyclooxygenase-2 (COX-2);(A), inducible nitric oxide synthase (iNOS);(B), Tumor necrosis factor α(TNF α); (C), Interleukin-6 (IL-6) Significance : *p < 0.01, **p < 0.001 vs. vehicle-treated RE rat values.

고 찰

장염은 균에 의한 감염과 폭식, 폭음, 식중독, 약물, 음식물에 의한 비감염성으로 나누어지고, 원인 물질에 따라 잠복기와 증상의 정도가 다르게 나타나며, 일반적으로 음식물 섭취 후 72시간 이내에 구토, 설사, 복통, 발열, 자통, 탈수 등의 증상을 나타낸다. 장염의 발병 원인으로 균에 의한 감염이 가장 큰 원인이다31). 그러므로 병원성 대장균 등과 같은 침투성 병원균이 직접 장관 점막층의 상피세포를 침투하여 다양한 증상을 일으킨다32). 염증은 세포 손상의 원인이 되고, 최근연구에 의하면 산화적 스트레스가 주요한 원인이 된다고 알려졌다33). ROS 생성에 의해 발생한 산화적 스트레스가 세포 손상을 야기하고, 이러한 ROS 감소는 세포 손상이 감소된다고 보고되어지고 있다34).

한방약은 오래전부터 다양한 질병을 치료하기 위해서 사용되어져 왔다. 황금은 임상적으로 생으로 사용하는 것과 열처리를 하는 두 가지 방법으로 사용됐고, 기존의 연구에 따르면 해열제, 간보호제, 항고혈압, 이뇨제, 항생제로 보고되고 있다35). 또한, 몇몇의 보고에 따르면 황금으로 분리된 flavonoid계 화합물인 baicalin, baicalein과 wogonin이 있다. flavonoid계는 의학적 및 임상적으로 항균작용, 항알러지작용, 항바이러스작용, 항암작용, 항산화작용과 항염증작용 보고되었다36,37). 본 연구에서는 황금이 LPS로 유도된 급성 장염 생쥐 모델38)에서 생황금과 주초(酒炒)한 황금 추출물을 이용하여 항산화 및 항염증 효과를 측정하였다.

LPS는 병원균의 내독소로서 호중구의 침윤 및 전 염증성 사이토카인과 매개자를 방출하여 염증과 면역반응을 야기한다. 본 연구에서는 염증의 전형적인 증상을 확인하기 위해 체중 변화 측정을 측정하였다. 생황금 추출물과 주초(酒炒)한 황금 추출물에서 체중 감소를 대조군에 비해 유의하게 방지한 것을 확인할 수 있었다.

산화적 스트레스는 LPS로 유도된 급성 장염에 중요한 역할을 하고 ROS의 과도한 생성은 항산화 시스템 불균형을 초래하고 결국 세포 손상을 야기한다. 또한 LPS는 과도한 NO 생성하여 iNOS 발현의 자극제로서 알려져 있다39). 과도한 NO 생성으로 유도된 iNOS는 직접적인 조직 기능 장애와 ONOO- 생성에 중요한 역할을 한다40). 따라서 ROS와, NO 억제는 조직 손상 개선에 주요한 요인이다. 본 연구에서는 혈액 내에서 산화적 스트레스의 바이오 마커인 ROS 및 NO 수치가 생황금 추출물에서는 유의성 없이 감소하는 경향이 있었지만 주초(酒炒)한 황금 추출물에서는 유의하게 감소하였다.

ROS 소거에 관련된 항산화 활성은 항산화 효소 단백질로 알려진 SOD, CAT와 GPx에 의해서 조절되어진다. 이 항산화 효소 단백질들은 스트레스로 때문에 ROS 축적으로 세포 손상과 데미지를 저항하기 위해 자극된다41). SOD와 CAT는 자유 라디칼의 노출에 우선적으로 보호하는 것으로 고려된다. 세포 내의 과도한 ROS 축적에 의해 O2-를 포함한 자유라디칼이 증가하는데 SOD로 인해서 O2- 수거된다. 이 반응은 H2O2를 생산하지만, CAT와 GPx는 H2O2를 H2O로 중화한다42). 본 실험에서는 장 조직에서 항산화 효소 단백질을 측정하기 위해 western blot를 실시하였다. 생황금 추출물에서는 SOD, CAT와 GPx 모두 유의성 없이 감소하는 경향만 있었고, 주초(酒炒)한 황금에서는 SOD를 제외한 CAT와 GPx는 정상군처럼 유의하게 증가하였다. 이를 통하여 생황금 추출물보다는 주초(酒炒)한 황금 추출물이 효과적으로 CAT와 GPx 발현 증가로 인해서 조직 손상을 억제하는 것으로 보여준다.

게다가, 증가된 ROS는 NF-κB p65와 AP-1의 한 부분인 c-JUN 전사인자와 같은 스트레스에 민감한 세포내 신호 기전의 활성으로 염증관련 단백질과 염증관련 사이토카인으로 인해 직접적인 세포 손상을 야기한다43). 본 실험에서는 대조군에 비해 NF-κB p65에서 추출물마다 유의한 차이를 얻진 못하였으나, c-JUN에서는 주초(酒炒)한 군에서 정상군에 가까운 유의한 차이를 얻을 수 있었다. NF-κB p65와 c-JUN과 같은 전사인자들은 iNOS와 COX-2와 같은 염증 효소를 조절하고, TNF-α 나 IL-6와 같은 염증성 사이토카인을 조절한다44). COX-2는 PEF2의 활성으로 염증반응을 활성화되고44), iNOS는 NO의 과잉 생성으로 인해 유도되어 세포내의 염증 관련 단백질로 작용한다45). TNF-α 는 패혈성 쇼크, 염증 및 세포 독성을 포함한 생리적인 영향을 준다. 또한 발열 및 암액질과 박테리아 패혈증, 류마티스 관절염과 크론병에 해로운 효과에 원인이 된다는 사실로 카켁틴으로 알려져 있고, 독소의 유해 효과의 주요 매개자인 LPS를 포함한 다양한 자극에 의해 단핵백혈구와 대식세포이 반응하여 분비된다고 발표된 바 있다46). IL-6는 T세포 분화을 자극하고, 세포성장, 생존 그리고 분화에 주요 조절자이면서 면역반응, 염증, 조혈 및 종양 형성과 같은 다양한 생물학적 반응을 관계돼 있다47). 본 실험에서는 western blot를 통해 NF-κB p65와 AP-1 관련 염증 단백질과 염증 사이토카인의 발현을 측정한 결과 대조군에 비해서 생황금 추출물에서는 모두 감소하는 경향을 보았고, 주초(酒炒)한 황금 추출물은 유의성 있게 감소하였다. 하지만 IL-6의 발현은 감소하는 경향만 확인하였다. 그러므로 주초(酒炒)한 황금 추출물 투여는 생황금보다 급성 장염에 대해 보호하는 효과가 보여진다.

급성 장염 모델 생쥐에서 200℃ 주초(酒炒)한 황금 추출물 투여한 결과 항산화 관련 효소인 SOD, CAT와 GPx의 발현증가를 통해 c-JUN의 발현은 뚜렷하게 감소되었고 그로 인하여 발현되었던 iNOS48), COX-249), TNF-α 48)와 IL-650)의 발현을 유의하게 감소시킴으로서 급성 장염의 보호효과가 있다는 것을 의미한다(Fig. 5).

Fig. 5.Possible mechanism for the effects of SR and SR200 on inteswtinal damage.

결 론

급성 장염을 유발시킨 생쥐에 생황금(SR)과 200℃ 주초(酒炒)한 황금(SR200) 추출물의 투여가 항산화 효과를 통한 장조직의 손상 및 항염증작용 효과를 알아본 결과 다음과 같은 결론을 얻었다.

그러므로 황금 추출물 투여보다는 200℃ 주초(酒炒)한 황금 추출물 투여가 급성 장염 모델에 보호하는 효과가 있다고 사료된다.