DOI QR코드

DOI QR Code

Inhibitive Effect of Mouse Sarcoma 180 by Crude Polysaccharide Extracted from Fruiting Body of Aramillaria mellea

뽕나무버섯(Armillaria mellea)의 자실체에서 추출한 조다당류가 생쥐의 Sarcoma 180에 미치는 억제효과

  • Published : 2006.12.31

Abstract

Armillaria mellea, one of edible and medicinal mushroom belonging to Tricholomataceae of Basid-iomycota, has been known to have outstanding inhibitive effects on the sarcoma 180 and Erhrlich carcinoma of mice. Neutral salt soluble (0.9% NaCl), hot water soluble and methanol soluble substances (hereinafter referred to Fr. NaCl, Fr, HW and Fr. MeOH, respectively) were extracted from the mushroom. In vitro cytotoxicity tests, crude polysaccharide were not cytotoxic against cancer cell lines such as NIH3T3 and Sarcoma 180 at the concentration of $1000{\mu}g/ml$. Intraperitoneal injection with crude polysaccharides exhibited life prolongation effect of $60{\sim}67.5%$ in mice inoculated with Sarcoma 180, respectively. Fr, NaCl improved the immunopotentiation activity of B lymphocyte by increasing the alkaline phosphatase activity by $1.8{\sim}3.0$ folds, respectively. In case of Fr. NaCl, the numbers of peritoneal exudate cells and circulating leukocytes were increased by 10 and 2 folds, respectively.

뽕나무버섯은 담자균문 송이과에 속하며 예로부터 항암 효과를 나타내는 식용버섯으로 알려져 있다. 뽕나무버섯 자실체로부터 중성염용액, 열수 및 메탄올 추출물을 분리하여 생쥐에 대한 항암 및 면역증강효과를 조사하였다. Sarcoma 180 복수암 세포를 주사하고 뽕나무버섯 조다당류를 투여한 실험군의 생쥐가 조다당류를 투여하지 않은 대조군의 생쥐에 비해 생명연장효과가 67.5%로 매우 높게 나타났다. 세포독성 실험결과, NIH3T3와 Sarcoma 180 세포주는 중성염용액, 열수 및 메탄올 추출물 $1000{\mu}g/ml$의 농도에서 배양하였을때 70% 내외의 생존률을 보였으며, 각 농도 구간에서도 세포독성을 나타내지 않았다. 중성염용액 추출물을 투여한 생쥐의 B 임파구 alkaline phosphatase 활성은 대조군에 비하여 약 3.0배 내외의 증가율을 보였으며, 총 복강 세포수도 대조군에 비해 최고 3.5배 가량 증가하였으며, 혈액 중 백혈구의 수도 대조군에 비하여 약 2.5배 증가하였다. 그리고 면역에 관련된 장기인 간, 비장 및 흉선의 체중도 대조군에 비하여 증가한 것을 확인하였다. 따라서 뽕나무버섯의 조다당류 추출물을 투여한 생쥐는 Sarcoma 180에 대한 항암 효과는 면역 활성의 증가에 의한 것으로 사료된다.

Keywords

References

  1. 구현옥, 김인천, 박신자, 정상희, 박종명, 이재진, 유한상, 이영순. 1999. 신령버섯(Agaricus blzei Murill)에서 분리한 다당체의 Staphylococcus aureus 감염 및 마우스 Sarcoma 180 종양세포에 대한 방어효과. 한국실험동물학회지 15: 155-158
  2. 박상신, 유국현, 민태진. 1998. 버섯추출물의 항산화 활성에 관한 연구. 한국균학회지 26: 69-77
  3. 박완희, 이호득. 1999. 한국약용버섯도감, 교학사
  4. 심성미, 임경환, 이우윤, 김정완, 심미자, 이민웅, 이태수. 2003a. 매미눈꽃동충하초(Paecilomyces sinclairii)에서 추출한 조다당류의 면역활성 및 항암효과에 관한 연구. 한국균학회지 31: 155-160 https://doi.org/10.4489/KJM.2003.31.3.155
  5. 심성미, 임경환, 김정완, 이우윤, 김하원, 이민웅, 이태수. 2003b 삼색도장버섯(Daedaleopsis tricolor)에서 추출한 조다당류의 면역활성 및 항암효과. 한국균학회지 31: 161-167 https://doi.org/10.4489/KJM.2003.31.3.161
  6. 신혜원, 김하원, 최응칠, 도상학, 김병각. 1985. 한국산 영지의 무기 성분 및 면역 증강 작용에 관한 연구. 생약학회지 16: 181-190
  7. 오윤희, 이우윤, 이민웅, 심미자, 이태수. 2004. 저령(Grifola umbellata)의 균핵에서 추출한 조다당류의 면역활성 및 항암 효과. 한국균학회지 32: 23-30 https://doi.org/10.4489/KJM.2004.32.1.023
  8. 조수묵, 이재훈, 한상배, 김환묵, 유승헌, 유익동. 1995. Fomitella fraxinea로부터 분리한 면역활성 다당류(I)-중성염 용액 추출 다당류의 특성. 한국균학회지 23: 332-339
  9. 조수묵, 이재훈, 한상배, 김환묵, 유승헌, 유익동. 1995. Fomitella fraxinea로부터 분리한 면역활성 다당류(II)-열수추출 다당류의 분리 및 특성. 한국균학회지 23: 340-347
  10. 진미림. 1996. 잣버섯 성분의 면역세포 및 전사인자의 활성화 작용에 관한 연구. 서울대학교 대학원 논문집. Pp 1-121
  11. 한만덕, 이은숙, 김영권, 이중우, 정훈, 윤경하. 1998. 영지의 균사체성 ${\beta}$-glucan에 의한 RAW 264.7 대식세포의 Nitric Oxide 생성 . 한국균학회지 26: 246-255
  12. 水野 卓, 川合正允. 1992. キノコの化學 . 生物學. 學會出版センタ
  13. Arthur, C. and Guyton, M. D. 1986. Textbook of Medical Physiology. 7th Ed. W. B. Saunder company. Pp 51-59
  14. Chihara, G., Hamuro, G., Meada, Y., Arai, Y. and Fukoka, F. 1970. Antitumor polysaccharide derived chemically from natural glucan (Pachman). Nature 225: 973-948
  15. Chihara, G., Maeda, Y., Hamuro, J., Sasaki, T. and Fukuoka, F. 1969. Inhibition of mouse Sarcoma 180 by polysaccharides from Lentinus edodes (Berk.) Sing. Nature 222: 687-688 https://doi.org/10.1038/222687a0
  16. Choi, S. H., Jun, C. D., Lee, B. S., Park, S. D., Oh, J. S. and Chung, H. T. 1993. Effect of various extrinsic and intrinsic factors on the nitric oxide production of murine macrophage. Kor. J. BRM 3: 15-22
  17. Denizot, F. and Lang, R. 1986. Rapid colorimetric assay for cell growth and survival modifications to the tetrazolium dye procedure giving improved sensitivity and reliability. J. lmmunol. Methods 89: 271-277 https://doi.org/10.1016/0022-1759(86)90368-6
  18. Gross, R. L. and Newberne, P. M. 1980. Role of nutrition in immunologic function. Physiol. Rev. 60: 188-302 https://doi.org/10.1152/physrev.1980.60.1.188
  19. Jan, A. M., Marielle, E. B., Peter, H. N., Pieter, S. H. and Ralph, V. F. 1992. INF-${\gamma}$ induced 1-arginine-dependent toxoplasmastic activity in murine peritoneal macrophages is mediated by endogenous tumor necrosis factor-${\alpha}$. J. lmmunol. 148: 568-571
  20. Kishida, E., Sone, Y., Shibata, S. and Misaki, A. 1981. Preparation and immunochemical characterization of antibody of branched ${\beta}-(1{\rightarrow}3)-D-glucan$of Volvariella volvacea and its use in studies of antitumor actions. Agric. Biol. Chem. 53: 1849-1859
  21. Komatsu, N., Okubo, S., Kikumoto, S., Kimura, K. and Saito, G 1969. Host-mediated antitumor action of schizophyllan, a glucan produced by Schizophyllum commune. Gann. 60: 137-44
  22. Mossman, B. T. 1983. In vitro approaches for determining mechanisms of toxicity and carcinogenicity by asbestos in the gastrointestinal and respiratory tracts. Environ. Health Perspect. 53: 155-161 https://doi.org/10.2307/3429628
  23. Ohno, N., Arai, Y., Suzuki, I. and Yadomae, T. 1986. Induction of alkaline phosphatase activity in murine spleen cells treated with various mitogens. J Phamacobio-Dyn. 9: 593-599 https://doi.org/10.1248/bpb1978.9.593
  24. Roland, J. F., Chmielewicz, Z. F., Weiner, B. A., Gross, A. M., Boenong, O. P., Luck, J. V., Bardos, T. J., Redly, H. C., Sugiura, K., Stock, C. C., Lucas, E. H., Byerrum, R. U. and Stevens, J. A. 1960. Calvacine, a new antitumor agent. Science 132: 1987
  25. Sugihara, T., Yoshioka, Y. and Nishioka, K. 1972. Anticomplementary activity of antitumor polysacchrides. Nature New Biology 235: 59-60
  26. Suzuki, M., Arika, T., Amemiya, T. and Fujiwara, M. 1982. Cooperative role of T lymphocytes and macrophages in antitumor activity of mice pretreated with schizophyllan. Jpn. J Exp. Med. 50: 59-65
  27. Tsugagoshi, S. and Ohashi, F. 1974. Protein-bound polysaccaride preparation, PS-K, effective against mouse sarcoma 180 and rat ascites hepatoma AH-13 by oral use. Gann. 65: 557
  28. Whistler, R. L., Bushway, A. A., Singh, P. P., Nakahara, W. and Tokuzen, R. 1976. Noncytotoxic, antitumor polysaccharides. Pp 235-275. In: Tipson, R. S. and Horton, D. Eds. Advances in Carbohydrate Chemistry and Biochemistry. vol. 32. Academic Press, New York

Cited by

  1. Immuno-stimulating and Antitumor Effects on Mouse Sarcoma 180 by Crude Polysaccharides Extracted from Fruiting Body of Hericium erinaceus vol.20, pp.4, 2010, https://doi.org/10.5352/JLS.2010.20.4.623
  2. Development and Application of Non-Destructive-Type Device of Ingredients in Mulberry Leaf Tea vol.8, pp.10, 2013, https://doi.org/10.13067/JKIECS.2013.8.10.1595
  3. Effect of Flammulina velutipes Extracts Cultivated with Oriental Herbal Plants on the Activation of Immune Cells vol.22, pp.6, 2012, https://doi.org/10.5352/JLS.2012.22.6.828
  4. Immuno-stimulating and Antitumor Effects of Crude Polysaccharides Extracted from Fruiting Body of Grifola frondosa vol.39, pp.1, 2011, https://doi.org/10.4489/KJM.2011.39.1.068
  5. Antitumor and Immuno-potentiating Activity against Mouse Sarcoma 180 by Crude Polysaccharides Extracted from Fruiting Body of Tricholoma matsutake vol.18, pp.9, 2008, https://doi.org/10.5352/JLS.2008.18.9.1290
  6. Antitumor and Immuno-potentiating Activities of Crude Polysaccharides from Fruiting Body of Agaricus brasiliensis vol.39, pp.1, 2011, https://doi.org/10.4489/KJM.2011.39.1.057